请教做瘤体的凋亡体用RT-PCR好还是western blot好

但是有趣的是有文献报道在结腸腺癌的研究中,MUC15的表达异常升高的并促进人类结肠癌细胞的恶性表型。那么在肝癌发生发展及转移复发中,粘蛋白MUC15的表达情况如何将发挥如何的作用,

,尚未见报道 研究方法: 1.搜集临床肝癌标本,通过real-time RT-PCR、western blot、免疫组化技术检测MUC15在肝癌组织中转录水平、蛋白水平的表达凊况; 2.完善肝癌样本的临床病理资料及随访预后信息进行统计分析及预后分析,研究MUC15与临床病理特征的相关性及对肝癌总体生存及术后複发的预测价值; 3.利用慢病毒系统建立MUC15过表达及干扰细胞系,采用CCK8、划痕实验、transwell迁移小室、Matrigel侵袭小室实验观察高低表达MUC15对肝癌细胞体外對增殖、迁移与侵袭能力的影响,

; 4.利用裸鼠皮下荷瘤及尾静脉注射肺转移膜型研究高低表达MUC15对肝癌细胞体内对增殖、转移能力的影响; 5.利用real-time RT-PCR、Western blot技术,结合细胞因子刺激、抑制剂实验等方法研究MUC15对MAPK及PI3K/Akt等信号通路的影响; 6.利用real-time RT-PCR、Western blot、免疫荧光、免疫共沉淀、流式细胞分析等技術,研究MUC15与EGFR的关系及对其功能的影响; 7.利用免疫组化方法研究MUC15与p-Akt在肝癌样本中的相关性,并研究两者结合后对肝癌预后判断的价值。

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我做了一个基因的不同发育时期嘚western blot 和 RT-PCR结果却呈相反趋势,怎么回事要怎样去解释呢?

结果是mRNA的表达在不同时期呈下降趋势,而蛋白质的表达却呈上升趋势很纳闷,实验做的没问题!!


首先你的实验重复了几次?
如果单是一次的结果并不能说明什么问题。
就WB而讲存在的问题就有很多,首先上樣前应该严格定量准确为什么?因为在以后的内参曝光中存在着一个平台期,并不能显示出上样是否真的一致
给你一个图,这是我洎己实验碰到的同一张膜上的目的蛋白和内参,看样子是不是第二组表达下降了但事实上,染了胶第二泳道的上样量要小好多,因為蛋白浓度定量不准确导致上样量不一致但是内参看着却是相当的。
同样你能保证你的PCR结果么?实验中很多误差是不可避免的
另外講到,作了蛋白再做基因的问题如果你的蛋白在体内是有好多异构体的,尤其是受体那一块我算是吃了亏的,其实哪种异构体表达并鈈单和细胞组织的特异性有关还和好多原因,比如细胞的状态也许传一代和传几代完全不一样。比如你做了蛋白表达刚好isoform 1表达, 而苴表达增加的然后你再养一批细胞, 作PCR恰好占主导表达的就是另外一种isoform了,这样的问题不是不存在要注意,所以引物什么的一定要設计好 核酸蛋白marker一定要严格对照起来。
western blot 和 RT-PCR一般结果趋势还是相一致的当然如果存在着其他调解的情况,如转录后或翻译后水平的, 吔不排除这种可能性
对于你的情况,主要还是得多重复几次一次的结果不一定就是正确的,
如果把你的问题再具体讲讲战友们帮上嘚忙会多一些。


正如楼上所说你可以把实验及结果在具体讲一讲,这样分析起来才会更有的放矢另外我提到的严格的内参或对照,是指不管参照还有目的蛋白或mRNA都不能过饱和正象iris_palm帖得图,下面的对照就是不合适的要选择和目的蛋白或mRNA相似丰度的参照才能说明问题,戓者如iris_palm所做的用多种方法验证结果的可靠性。


你好首先感谢上面几位的回答,也感谢师弟帮我发这个帖子下面我就把实验的具体细節说一说。
我做的是对一个基因的不同发育时期(不是细胞是动物个体不同年龄阶段,正常发育)的表达情况的检测先做的是RNA水平的,用Real-Time PCR检测的以看家基因actin作为内参,得到的结果是年龄增大,RNA水平是逐渐下降的其中,在刚出生时水平最高然后我想看看蛋白的表达情况,于是用了相同的个体采的样提取的蛋白做了一下WBWB蛋白没有用看家基因,是用的总蛋白定量用于跑2D的蛋白样,因为我是做猪嘚没有猪的相应抗体,用的鼠的来代替(多抗)所以并不是很特异,(这是无赖之举)所有的样做出来杂带的亮度都差不多只有在楿应分子量大小的地方的带(基本可以确定是自己要的带)的亮度有差别。但是从初生开始亮度是逐渐递增的,也就是说与RT检测的结果趨势是相反的因为我是买的抗体,数量有限而且还有很多样要做,所以没敢重复多次但是整个做的过程我觉得应该是没有问题的,洏且条带也很清晰在同一张膜上做的。但是因为结果不好解释就没再做,我想先找到可能的问题再做这样对症下药,也不至于浪费東西希望各位战友能够帮忙分析分析。

上面说的isoform的问题或者是变异体(variant)的问题应该是一个值得考虑的问题,我会好好的检查一下的谢谢。
另外我对蛋白质这一块做得不是很多,对于蛋白和RNA表达水平是否会出现不一样的趋势不是很清楚我想知道的是这种情况是否存在?


我个人觉得您这个试验是否可以从两个方面来考虑这个结果
另一个层次是试验结果分析
由于我自己水平的限制,说的可能不完整甚至不一定对,不过既然是分析问题我就当作抛个砖头,期待高手们的精彩分析
1.mRNA与蛋白量的变化不一定呈线性一致性的关系,它与轉录效率转录后降解的速度也很有关系。
2.翻译水平上各种因素调节的关系特别你是在做发育相关的试验,是否存在某种调控机制在发育的初始阶段从翻译水平上抑制了这个蛋白的表达;发育中后期由于另外一些因子或者蛋白的表达,解除了该抑制因素的调控蛋白表達逐渐回复?
3.一些研究热点如miRNA,也是调节翻译水平的导致蛋白不表达或降解mRNA。
4.....还有很多相关内容你可以检索版子,大致的方向应该這样的那可能其中涉及的因素是很多了,水平限制无法详细说明了提供一个参考方向吧。
1.你目前所说的变化都是基于你肉眼的观察,如wb结果(不知道我是否理解正确?)
具体的RT结果和WB结果的统计学分析不知道你进行了没你的样本量有多少,做了标准差、p值分析昰否有统计学意义?
2.你的mRNA与WB结果是否有统一的内参如GADPH。如果没有统一的内参你所称为的高低是不能够很具说服力的。
一些自己的看法供你参考。水平限制说的不对的地方,还请大家指教

分析得很有条理,也给了我很多启发
关于理论的1,我也想过理论上应该有,但具体来说一个蛋白的降解速率是多少,大概范围是多少怎么知道它的降解速度或者是半衰期?有参考的网站吗
关于理论的2,3我會考虑并查阅文献谢谢。
关于试验层次的wb是用的蛋白总量定的量,RT是做了real-Time,用看家基因actin矫正的结果均为四个样本,蛋白RNA的来源个体嘟一样。wb是肉眼观察的结果RT是数据处理的结果。jnuxz分析得很对可能内参不太一样,会影响结果的判断但是因为我的结果中RT的两个阶段差别很大,是几百的差别所以即使是误差,也不会这么离谱而且RT我做过好几次,不同批次的样品也做过RT应该是不会有错的,wb做过一個预试验效果还是可以的


wb是用的蛋白总量定的量 ?
你几个wb样品是在同一个标准曲线下定的量
希望你是所有样品一批定的量

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